罗伊氏乳杆菌增强卵巢功能及雌性生育力
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研究论文
● 期刊: iMeta (宏,IF 44.4、双一区Top)
● 英文题目: Limosilactobacillus reuteri enhances ovarian function and female fertility
● 中文题目: 罗伊氏乳杆菌增强卵巢功能及雌性生育力
● DOI: https://doi.org/10.1002/imt2.70164
● 2026年8月6日,中国农业科学院北京畜牧兽医研究所罗会颖、郝永胜、赵勇、秦星等在iMeta在线发表了题为“Limosilactobacillus reuteri enhances ovarian function and female fertility”的文章。本研究是首个通过发现-验证-基因敲除动物验证,证实了益生菌提高雌性动物生育力:(1)来自小鼠肠道的罗伊氏乳杆菌Y15(LRY15)可合成多不饱和脂肪酸(PUFAs)以提高雌性生育能力;(2)缺失PUFA合成酶AcpS的LRY15菌株(AcpS-KO)产生的PUFA量降低且不能提高雌性生育力,而补充DHA同LRY15一样提高雌性生殖力;(3)进一步PUFA合成酶Fads2敲除小鼠证实,LRY15合成的PUFAs可通过改善卵巢细胞的胞间连接来挽救雌性生育力。我们相信,本研究的发现将有力推动该领域的发展,并激励开展进一步研究以鉴定有益菌及转化性策略,从而提升人类生育能力——这一当前亟待解决的全球健康挑战。
● 第一作者:郝永胜(HaoYS2019@163.com)、李宇康(821012410055@caas.cn)、李燊(lishen20192019@outlook.com)、霍娟丽(hjllix_0209@163.com)
● 通讯作者:赵勇(zhaoyong1688@caas.cn)、罗会颖(luohuiying@caas.cn)、秦星(qinxing@caas.cn)
● 合作作者:游宁航、李磊、张卫东、魏华凯、孙青原、庞云渭、秦训思、涂涛、黄火清、田健、张鹏飞、王亚茹、徐欣欣、姚斌、沈伟
● 主要单位:中国农业科学院北京畜牧兽医研究所、畜禽营养与饲养全国重点实验室、畜禽生物育种全国重点实验室、青岛农业大学、山西农业大学、广东第二人民医院、北京大学第三医院、Murdoch大学
● 源自小鼠肠道的天然罗伊氏乳杆菌Y15(LRY15)可合成多不饱和脂肪酸(PUFAs);
● 通过基因工程改造LRY15删除PUFAs合成酶Acps,抑制PUFA的生成;
● PUFAs介导LRY15增强卵巢功能的作用;
● LRY15合成的PUFAs可改善卵巢细胞的胞间连接功能,提高生育力。
罗伊氏乳酸杆菌Y15(LRY15)可合成多不饱和脂肪酸(PUFAs)加强卵泡细胞间连接功能,提高生育力。从饲喂褐藻寡糖(AOS)的小鼠肠道中分离筛选获得LRY15,其能够改善顺铂导致的生育力低下小鼠的卵巢功能及生育力。LRY15可合成PUFAs,而敲除LRY15中的酰基载体蛋白合成酶(AcpS)降低了PUFA合成能力并削弱其保护卵巢的能力。补充二十二碳六烯酸(DHA)可同LRY15一样加强卵泡发育,增强胚胎发育能力。空间转录组测序分析表明,LRY15能够恢复卵巢细胞的胞间连接结构及功能,进而提高生殖力。Fads2敲除小鼠进一步证实,LRY15产生的PUFAs可恢复卵巢细胞的胞间连接完整性,改善雌性生育力。
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引 言
卵巢功能障碍是女性不孕的主要原因,约占不孕不育总数的20%至40%。最新证据表明,肠道微生物及其代谢产物参与调控卵巢功能及雌性生育力。尽管肠道微生物与生殖力存在关联,但阐明特定益生菌如何调节卵巢功能或可为提升雌性生育力提供新的策略。
我们前期研究表明,褐藻寡糖(AOS)可增强卵巢功能并增加肠道有益微生物的丰度。本研究从AOS饲喂小鼠肠道中分离获得罗伊氏乳杆菌Y15(LRY15),并证实该菌能改善顺铂(CIS)导致的生育力低下小鼠的卵巢功能及雌性生育力。LRY15合成PUFAs,而敲除LRY15中酰基载体蛋白合成酶(AcpS)的菌株AcpS-KO抑制了PUFA合成。AcpS-KO菌株失去了改善卵巢功能和雌性生育力的能力,而补充二十二碳六烯酸(DHA)与LRY15一样能够增强卵巢功能,提高雌性生育力。
空间转录组测序分析表明,LRY15可修复卵巢细胞的胞间连接结构,从而增强卵巢功能及雌性生育能力。这些发现在PUFA合成酶Fads2基因敲除小鼠(Fads2-/-)中得到进一步验证。综上所述,我们的研究结果表明:LRY15通过PUFA介导的卵巢细胞的胞间连接修复作用提升雌性生育能力,这凸显了益生菌干预作为改善卵巢功能和促进生殖健康的潜在治疗策略。
结 果
LRY15可挽救CIS损伤小鼠的卵巢功能及提高雌性生育能力
LRY15从AOS饲喂小鼠的肠道中分离获得,并在体外培养中表现出典型的生长模式(图S1A、B)。剂量依赖性研究表明,浓度为1× 10⁸ CFU mL-1的LRY15能够提高妊娠率,并显著增加CIS处理后小鼠窝活仔数(图S1C-E及表S1)。
图1. 多不饱和脂肪酸(PUFAs)介导罗伊氏乳杆菌Y15(LRY15)增强卵巢功能及雌性生育能力的作用
(A)LRY15改善卵巢功能及雌性生育力的实验方案示意图。(B)小鼠典型的动情周期。P: 发情前期; E: 发情期; M/D: 发情后期/发情间期。(C)怀孕率[CON, 46/52 (88.46%);CIS, 33/50(66.00%);CIS+LRY15, 45/52(86.54%)]。CON: 对照组; CIS: 顺铂组。(D)产子数(CON, 46 窝; CIS, 33 窝; CIS+LRY15, 45 窝)。(E)卵巢组织结构。 标尺 = 250 μm。(F)不同阶段卵泡发育情况(CON, n = 16; CIS, n = 15; CIS+LRY15, n = 16)。PmF: 原始卵泡; PF: 初始卵泡; SF: 二级卵泡; AF: 有腔卵泡。 (G)蛋白免疫印迹分析卵巢组织中AMH、MVH、GDF9 (n = 3)。(H)LRY15基因组的环形示意图。LRY15含有多不饱和脂肪酸(PUFAs)合成基因酰基载体蛋白合成酶AcpS。(I)LRY15敲除基因AcpS产生AcpS-KO菌株及其代谢物检测示意图。(J)定量分析LRY15菌体和AcpS-KO菌体中a-亚麻酸(ALA)、二十碳五烯酸(EPA)、二十二碳六烯酸(DHA)、亚油酸(LA)、g-亚麻酸(G LA)、花生四烯酸(ARA)。(K)怀孕率[CON, 45/48 (93.75%);CIS, 33/47(70.21%);CIS+AcpS-KO, 37/48(77.08%)]。(L)产子数 (CON, 45 窝; CIS, 33 窝; CIS+AcpS-KO, 37窝)。所有数据均以平均值 ± 标准误表示。(C)和(K)中p值由Fisher’s exact test检验确定;(D)、(F)和(L)中p值由one-way ANOVA with Dunnett’s multiple comparisons test检验确定;(J)中p值由two-tailed Student’s t-tests检验确定。
CIS+LRY15(1× 10⁸ CFU mL-1;图1A及表S1)可恢复雌鼠动情周期和生殖力,具体表现为怀孕率及每窝活仔数均显著提高(图1B-D及S1F、G)。组织学分析表明,CIS+LRY15显著增加了原始卵泡和总卵泡数量(图1E、F)。同时,这些结果得到了卵巢组织中抗缪勒管激素(AMH ,卵巢储备功能的生物标志物)以及卵母细胞特异性蛋白[包括小鼠VASA同源蛋白(MVH)和生长分化因子9(GDF9)]的蛋白水平的支持(图1G和S1H)。此外,LRY15显著减少了闭锁卵泡的数量,而具有正常透明带染色的卵母细胞数量增加(图S1I-K)。此外,在体外受精(IVF)分析表明,CIS降低卵母细胞的受精能力,并抑制2细胞期、4细胞期及囊胚期的早期胚胎发育;而CIS+LRY15则能挽救这些发育过程(图S1L−N)。
为确定LRY15增强雌性生殖力作用的特异性,我们同时研究了从饲喂AOS小鼠肠道中分离获得的另一株罗伊氏乳杆菌Y20(LRY20)(表S1)。CIS+LRY20组的妊娠率[38/51(74.5%)vs. 45/52(86.5%);p = 0.1420]及每窝活仔数(11.29 ± 0.5 vs. 12.62 ± 0.5;平均值 ± 标准误;p = 0.0296)均低于LRY15,表明LRY15具有特异性增强卵巢功能和雌性生育力的能力。LRY15和LRY20代谢物分析显示,LRY20菌体中的二十碳五烯酸(EPA)和二十二碳六烯酸(DHA)含量显著低于LRY15(图S1O−Q)。因此,PUFAs可能是LRY15提高雌性生育力关键代谢物。
抑制PUFA合成削弱了LRY15改善CIS导致的生育力下降小鼠卵巢功能及雌性生育力的功能
首先,我们对LRY15进行了基因组重测序(表S2)。PUFAs可通过厌氧聚酮合酶途径合成,该途径主要存在于微生物(包括细菌及某些真核生物如裂殖壶菌)。而且,我们meta-analysis分析表明,编码PUFA合成酶的基因广泛存在于微生物中,包括罗伊氏乳酸杆菌(表S3)。在LRY15中鉴定出了参与厌氧条件下PUFA生物合成的酶,例如AcpS(图1H和表S2)。敲除AcpS基因抑制LRY15细胞中PUFA合成,并获得AcpS-KO菌株(图1I及S2A、B)。与LRY15相比,AcpS-KO中的n-3多不饱和脂肪酸[α-亚麻酸(ALA)、EPA和DHA]以及n-6多不饱和脂肪酸[亚油酸(LA)、-亚麻酸(GLA)和花生四烯酸(ARA)]含量均显著降低(图1J),上述结果表明,AcpS基因敲除菌株中PUFAs合成已被成功抑制。
此外,AcpS-KO菌株丧失了改善CIS导致的怀孕率及每窝活仔数下降的能力(图1K、L及表S1)。CIS组与CIS+AcpS-KO组在不同发育阶段的卵泡数量相当(图S2C、D),MVH、AMH和GDF9蛋白水平也相近(图S2E、F)。与对照组(CON)相比,CIS组及CIS+AcpS-KO组的闭锁卵泡数量均有所增加(图S2G−L)。此外,CIS+AcpS-KO未能改善卵母细胞的受精能力及早期胚胎发育(图S2M−O)。
在CIS诱导的生育力低下小鼠中,LRY15可升高血浆及卵巢PUFA浓度
血浆非靶向代谢组主成分分析(PCA)显示不同处理组间代谢物存在显著差异(图S3A和表S4)。KEGG通路分析表明,CIS+LRY15中增加的代谢物主要富集于不饱和脂肪酸生物合成通路(图S3B、C)。VIP分析中显示,DHA是区分CIS+LRY15与CIS的十大PUFA相关代谢物之一,并在这些差异代谢物中具有最高的VIP评分(图S3D)。
随后,我们比较了CIS+LRY15与CIS+AcpS-KO组间的血浆代谢组,KEGG 分析表明,与CIS+AcpS-KO相比,CIS+LRY15组中不饱和脂肪酸生物合成途径在上调代谢物中显著富集(图S3E、F)。VIP分析进一步证实DHA是一种重要的PUFA相关代谢物,对组间区分具有重要作用(图S3G)。而且,与CIS组相比,CIS+LRY15组的血浆DHA水平显著升高;而CIS+AcpS-KO组中,DHA水平则明显降低(图S3H)。
随后,我们进一步探究卵巢PUFA水平的变化。卵巢组织靶向代谢组学分析表明,LRY15(而非AcpS-KO)可显著提高卵巢中DHA、EPA、GLA和LA的水平(图S4A−H及表S5)。综上所述,LRY15能够重塑血液及卵巢PUFA的代谢谱,其中DHA作为主要代谢物可能在其发挥有益作用中起关键作用。
补充DHA可重现LRY15对CIS导致的生育力低下小鼠卵巢功能及雌性生育能力的改善作用
进一步研究表明,补充DHA可显著增加每窝产子数(图S5A−C及表S1)。组织学分析表明,CIS+DHA显著增加了原始卵泡和总卵泡数量(图S5D、E)。这些结果得到了MVH、AMH和GDF9蛋白水平升高以及卵泡闭锁现象减少的支持(图S5F−M)。而且,靶向卵巢代谢组学分析表明,补充DHA可增加卵巢中特定多不饱和脂肪酸(PUFAs)的浓度,包括DHA、EPA、LA和ARA(图S6A−H及表S5)。IVF分析表明,DHA可增强卵母细胞的受精能力及早期胚胎发育能力(图S6I-K)。
此外,在正常小鼠(未进行CIS处理)中,LRY15、AcpS-KO和DHA处理没有改变怀孕率及每窝产子数(图S6L−N),表明这些处理对雌性生殖功能无不良影响。
LRY15与DHA可恢复CIS诱导的生育下降小鼠肠道微生物菌群失调
CIS组与CON组、CIS+LRY15组、CIS+AcpS-KO组以及CIS+DHA组的结肠微生物存在显著差异(图S7A)。与其他组别相比,CIS组中的Ace指数和Shannon指数均显著降低(图S7B、C)。微生物组成及MaAsLin2分析表明,埃希氏菌属(Escherichia)、布劳氏菌属(Blautia)和副拟杆菌属(Parabacteroides)在CIS样本中富集;而罗伊氏乳酸杆菌属(Limosilactobacillus)、乳酸杆菌属(Lactobacillus)、邓卡尼菌属(Duncaniella)和穆里巴克菌属(Muribaculum)则在CON、CIS+LRY15以及CIS+DHA样本中显著富集(图S7D-J)。此外,基于物种水平的随机森林分析表明,罗伊氏乳杆菌(Limosilactobacillus reuteri)是各组中最具区分能力的菌种(图S7K、L及表S6)。
空间转录组测序分析表明,LRY15可恢复CIS诱导的生育力下降小鼠卵巢颗粒细胞和卵母细胞的功能
为进一步解析LRY15改善卵巢功能和提高雌性生育力的机理,我们采用空间转录组测序技术对卵巢空间基因表达特征进行解析(图2A和S8)。
卵母细胞GO富集分析表明:与CON组相比,CIS组中表达下调的差异表达基因(DEGs),而与CIS组相比,CIS+LRY15组中表达上调的DEGs均显著富集于生殖过程相关通路,包括卵母细胞发育、雌性配子生成及卵子发生(图S9A、B),这表明LRY15能够恢复卵母细胞发育和卵巢功能所必需的转录程序。参与卵母细胞发育的关键基因H3f3a和Grb14在CIS+LRY15中表达显著升高(图S9C、D)。而且,在CIS+LRY15组卵巢细胞中,由P53驱动的卵母细胞凋亡信号通路相关基因集评分显著降低(图S9E-G)。同时,促凋亡标志物(包括P53和BAX/BCL2)的蛋白水平在CIS+LRY15组中均降低(图S9H、I)。CellChat分析进一步揭示,在CIS+LRY15组的卵母细胞中,胰岛素样生长因子(IGF)信号通路活性增强,尤其表现为卵母细胞与颗粒细胞之间Igf1-Igf1r配体-受体相互作用显著增加(图S9J−L)。已知该信号通路在卵泡发育过程中对防止细胞凋亡起着关键作用。
在颗粒细胞中,GO富集分析显示差异表达基因(DEGs)显著富集于生殖通路相关领域,包括排卵、骨形态发生蛋白(BMP)信号通路、类固醇激素生物合成以及卵泡发育(图2B)。基因集评分显示,在CIS+LRY15组中排卵通路评分显著升高,同时主要排卵标志基因Inhba和Inhbb的表达水平也显著升高(图S10A-G)。此外,与CON相比,在CIS中表达上调的差异表达基因(DEGs)主要富集于凋亡信号通路,反映了CIS诱导的严重细胞凋亡(图S10H)。同时,CIS+LRY15降低了细胞凋亡信号通路评分,并减少了γH2AX阳性及TUNEL阳性细胞数量(图S10I−N)。
图2. LRY15通过PUFA通路修复卵巢细胞间的胞间连接,从而增强卵巢功能及雌性生育力
(A)CON、CIS及CIS+LRY15卵巢空间转录组测序分析工作流程概述(n = 6)。 (B)颗粒细胞差异表达基因(DEGs)GO富集信号通路:这些基因在CIS组相较于CON组表达降低,但在CIS+LRY15组相较于CIS组表达升高。(C)对CON、CIS及CIS+LRY15组颗粒细胞中细胞连接组装基因集评分(n = 6)。箱线图显示最小值、第25百分位数、中位数、第75百分位数及最大值。(D)细胞连接组装评分的空间分布情况(CON组、CIS组及CIS+LRY15组的代表性卵巢样本)。(E)小提琴图显示Gja1在CON、CIS及CIS+LRY15组颗粒细胞中的表达情况(n = 6)。(F)Gja1在CON组、CIS组及CIS+LRY15组代表性卵巢样本中的表达空间分布。(G)示意图展示了获得Fads2基因敲除小鼠(Fads2-/-)的策略,以及LRY15、AcpS-KO和DHA的处理方案。(H)野生型(WT)、Fads2-/-、Fads2-/- + LRY15、Fads2-/- + AcpS-KO及Fads2-/- + DHA卵巢切片中F-actin、CX43、CX37和ZO-1免疫荧光染色图。标尺: 25 μm (F-actin);20 μm(CX43、CX37和ZO-1)。WT: 野生型; CX43: 连接蛋白43; CX37: 连接蛋白37; ZO-1:紧密连接蛋白-1. (I)怀孕率[WT, 22/24(91.67%);Fads2-/-, 12/23 (52.17%);Fads2-/- + LRY15, 26/31(83.87%);Fads2-/- + AcpS-KO, 11/21(52.38%);Fads2-/- + DHA, 14/19(73.68%)]。(J)产子数(WT, 22窝; Fads2-/-, 12 窝; Fads2-/- + LRY15, 26 窝; Fads2-/- + AcpS-KO, 11 窝; Fads2-/- + DHA, 14 窝)。所有数据均以平均值 ± 标准误表示。(C)和(E)中p值通过two-side Wilcoxon rank-sum test检验确定;(I)中p值通过Fisher’s exact test检验确定;(J)中p值通过one-way ANOVA with Dunnett’s multiple comparisons test检验确定。
为研究颗粒细胞亚型转录状态的变化,将颗粒细胞按其显著的转录异质性分为四种亚型(图S11A)。值得注意的是,主要分布于卵巢皮质邻近区域的亚型3表现出最高的CytoTRACE评分,表明其具有最大的分化潜能和转录多样性(图S11B、C)。其亚型特异性基因参与激素代谢过程(图S11D−F)。转录因子(TF)活性分析显示,在CIS+LRY15细胞中Nr5a1活性增强,这与其调控颗粒细胞分化及类固醇激素生物合成的作用一致(图S11G)。因此,CIS+LRY15可上调类固醇生成基因Cyp11a1和Cyp19a1的表达(图S11H,I)。而且,免疫荧光染色显示CIS+LRY15组卵泡中PCNA阳性颗粒细胞数量增多(图S11J、K)。
我们进一步探究了AcpS-KO与DHA对这些参数的影响。PCNA阳性细胞的比例在CIS与CIS+AcpS-KO组间相当,但在CIS+DHA组中高于CIS组(图S12A、B)。此外,DHA可减弱CIS诱导的TUNEL阳性细胞及凋亡相关蛋白数量的增加,而AcpS-KO则无此功效(图S12C−H)。结果表明,DHA在恢复因CIS损伤而受损的卵巢细胞功能方面与LRY15具有相似潜力;而AcpS-KO则仅表现出有限的保护作用。
LRY15可恢复卵巢细胞的胞间连接,从而提升CIS诱导的生育下降小鼠的生育力
颗粒细胞通过提供营养物质和传递信号来促进卵泡发育并维持卵母细胞质量;而基于肌动蛋白丝形成的胞间连接对于这些过程至关重要。值得注意的是,颗粒细胞中的肌动蛋白丝结构及胞间连接组装信号通路在CIS组中降低的差异基因(DEGs)中富集,而这些通路可被LRY15恢复(图2B)。通过基因集评分表明,CIS+LRY15能改善颗粒细胞的胞间连接组装及肌动蛋白丝组织结构;空间定位分析进一步证实这些改善效应同样存在于窦状卵泡中(图2C、D及S13A、B)。在这些基因集中,标志性的Gja1[编码连接蛋白43(CX43)的缝隙连接基因]表达在CIS+LRY15细胞中得到恢复(图2E、F及S13C)。进一步验证表明,CIS+LRY15细胞中F-肌动蛋白(F-actin)及细胞连接蛋白[包括CX43、连接蛋白37(CX37)和紧密连接蛋白-1(ZO-1)]的蛋白水平均得到恢复,而AcpS-KO组仅呈现有限改善。但是,补充DHA同样能恢复这些蛋白质水平(图S13D、E)。前期研究发现,通过删除PUFA合成酶来抑制PUFA生成会破坏小鼠卵巢细胞的胞间连接并损害雌性生育力;而补充DHA则能恢复细胞的胞间连接完整性并提升生育能力。综上所述,LRY15可通过PUFA介导的胞间连接修复来改善卵巢功能。
源自LRY15的PUFAs可恢复Fads2-/-生育力下降小鼠卵巢细胞的胞间连接并改善其雌性生育力
为验证上述发现,我们应用了Fads2基因敲除小鼠(该模型可阻断必需内源PUFA合成,包括DHA)(图2G、S14A,B及表S1)。这些小鼠表现出卵巢细胞的胞间连接受损及雌性生育力低下。野生型(WT)与Fads2-/-小鼠的体重基本一致(图S14C)。在Fads2基因敲除小鼠中,LRY15和DHA通过重建胞间连接、恢复F-actin组装以及增加卵巢中ZO-1的表达,改善了卵泡细胞的胞间连接(图2H及S14D−G)。而且,LRY15和DHA均增加了初级卵泡及总卵泡数量(图S14H,I),表明卵泡发生过程得到改善。同时,AMH、GDF9和MVH蛋白水平升高以及闭锁卵泡数量减少(图S14J−P)。此外,LRY15和DHA(而非AcpS-KO)可提高Fads2-/-小鼠的怀孕率及每窝产仔数(图2I、J)。综上所述,源自LRY15的PUFAs能够恢复卵巢细胞的胞间连接、促进卵泡发育和提升雌性生育力。
结 论
综上所述,我们的研究证明,LRY15产生的PUFAs能够修复受损卵巢细胞的胞间连接,恢复卵泡的发育与功能,进而提升雌性生育力。这些研究结果为探究肠道-卵巢轴机制提供了有力证据,并为改善卵巢功能、生殖健康及生育力提供了具有前景的策略。而且,使用益生菌LRY15是一种成本低效益高的干预措施,在资源匮乏地区尤为适用。
代码和数据可用性:
本研究所使用的原始测序数据已存储在NCBI数据平台(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)中,登录号为PRJNA1310204、PRJNA1310675和PRJNA1288033。主要数据和代码已上传至Github网站,网址为:https://github.com/Haoys2019/LRY15_Reproductive_Study。更详细的数据信息可联系通讯作者获取。补充材料(文本、图、表、中文翻译版本或视频)也可从线上(http://www.imeta.science/)获取。
引文格式:
Yongsheng Hao, Yukang Li, Shen Li, Juanli Huo, Ninghang You, Lei Li, Yue Jiang, et al. 2026. Limosilactobacillus reuteri enhances ovarian function and female fertility. iMeta 5: e70164. https://doi.org/10.100 2/imt2.70164.
https://doi.org/10.1002/imt2.70164
郝永胜(第一作者)
● 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所在读博士研究生。
● 研究方向为微生物与动物繁殖,以第一作者在iMeta等期刊发表SCI论文3篇。
李宇康(第一作者)
● 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所在读博士研究生。
● 研究方向为微生物与动物繁殖,以共同第一作者在iMeta、Cell Proliferation期刊发表SCI论文2篇。
李燊(第一作者)
● 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所在读博士研究生。
● 研究方向为微生物分子生物学与基因工程,以第一作者(含共同作者)在iMeta、Frontiers in Cell and Developmental Biology、Scientific Reports等期刊发表SCI论文4篇。
霍娟丽(第一作者)
● 山西农业大学硕士研究生。
● 研究方向为动物营养与饲料科学,以第一作者在iMeta、Theriogenology期刊发表SCI论文2篇。
罗会颖(通讯作者)
● 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所研究员,博士生导师,微生物与酶工程创新团队首席,畜禽营养与饲养全国重点实验室副主任。
● 主要研究方向为微生物代谢与酶工程、饲用绿色投入品生物制造。先后主持国家重点研发计划项目、国家自然基金重点项目等多项国家及省部级项目。获得国家科学技术进步奖二等奖1项,北京市科技进步一等奖1项,大北农科技奖特等奖1项,湖北省科技进步一等奖1项,国家发明专利优秀奖4项,中国产学研合作创新成果奖一等奖1项。在iMeta、Nat Commun、Genomics Proteomics Bioinformatics等期刊发表SCI论文130余篇。
赵勇(通讯作者)
● 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所教授,博士生导师。
● 研究方向为微生物与动物生殖健康。先后主持国家重点研发计划项目、国家自然基金面上项目等多项国家及省部级项目。率先证实了“肠-睾丸轴”,创制多种提升繁殖力的益生元、益生菌及复合剂产品,为改善人生殖健康、提高优良种畜禽利用效率提供了新途径。在iMeta、Gut、Microbiome等期刊发表SCI论文80余篇。
秦星(通讯作者)
● 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所副研究员,硕士生导师。
● 研究方向为微生物与酶工程改造,自主构建肠道益生菌遗传改造技术平台,聚焦解析益生菌在宿主体内的代谢特征,系统阐明其益生功能的分子作用机制。先后主持国家自然科学基金面上项目、青年科学基金项目(C类)、国家重点研发计划项目子课题、中国农业科学院青年创新专项等多项科研项目。以第一/通讯作者在Bioresource Technology、ACS Sustainable Chemistry & Engineering、Applied and Environmental Microbiology等期刊发表SCI论文20余篇。
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iMeta(宏)是由威立、宏科学和本领域数千名华人科学家合作出版的开放获取期刊,主编由中科院微生物所刘双江研究员和荷兰格罗宁根大学傅静远教授担任。目的是发表生物、医学及前沿交叉学科高影响力(IF>30)的研究、方法和综述。期刊特色包括中英双语图文、双语视频、可重复分析、图片打磨、60万用户的社交媒体宣传等。2022年2月正式创刊!相继被Google Scholar、PubMed、SCIE、ESI、DOAJ、Scopus等数据库收录!2026年6月影响因子44.4,一区Top,位列全球SCI期刊千分之二(47/22643),中国期刊4/819!
iMetaOmics(宏组学)主编由中国科学院北京生命科学研究院赵方庆研究员和香港中文大学于君教授担任。iMetaOmics(宏组学)相继被PubMed、ESCI、DOAJ、Crossref和EZB等数据库收录,目标是成为IF>15的高水平生物医学综合期刊,欢迎投稿!
iMetaMed(宏医学)专注于医学、健康和生物技术领域,目标是成为IF>15的医学综合类期刊,欢迎投稿!
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iMetaOmics(宏组学)出版社主页:
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iMetaOmics(宏组学)投稿:
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